図1. Lotus DNAライブラリ調製の概要
酵素を用いる事によって断片化に必要な機器や、調製にかかる時間を減らすことができます。

図2. PCR-freeおよびPCR増幅を行った何れのライブラリでも、均⼀なカバレッジな取得可能
100 ngのヒトゲノムDNA（NA12878、Coriell）から、完全⻑UDI-UMIアダプター（IDT）を使⽤して、PCR-freeまたはPCR増幅（4 cycle）の条件でライブラリ調製を行いました。PCR-freeのライブラリはMiSeq（Illumina）、PCR増幅したライブラリはHiSeq 4000（Illumina）でシーケンスをしております。
■青と■水色は各ライブラリのNormalized coverage、灰色のヒストグラムは100 bpで分割した際の数をGC含量ごとに表示しています。

図3. 体細胞変異検出用のカスタムxGen Lockdownパネルを使用した、各インプット量のカバレッジ
ヒトゲノムDNA（NA12878､Coriell）から、完全長アダプターを使用してライブラリ（10、25、250 ng）を調製し、カスタムxGen Lockdownパネルで75 kbのターゲット領域を濃縮しました。
濃縮したライブラリはNextSeq（Illumina）でシーケンスし、500,000リードをサブサンプリングしました。各インプットごとの平均カバレッジを示しています（n=6）。

図4. xGen Exome Research Panelを用いた均一なシーケンスカバレッジにより、シーケンスコストを削減可能
（Ａ）100 ngのヒトゲノムDNA（Coriell）から、stubbyアダプターを使用してライブラリを調製し、xGen Exome Research Panelを用いて濃縮しました。
濃縮したライブラリをNextSeq（Illumina）でシーケンスし、50Mリードをサブサンプリングしました。
Picardを用いて解析した本データは、duplicateが5.3％、オンターゲット率が90.2％と深く均一なカバレッジを示しています。
（Ｂ）xGen以外のキャプチャー技術ではカバレッジの取得が難しい、RB1遺伝子のExon 1および2のカバレッジを示しています。

図5. ゲノムのサイズ、インプット量、GC含量が変動しても、メタゲノム解析の結果に影響はない
（A）MSA-1000™マイクロバイオームスタンダード（ATTC、微生物群10株）から、完全長アダプターを用いてP5/P7プライマーでPCR増幅し、ライブラリ調製を行いました。
（B）5 ngのMSA-1000ゲノムDNAからライブラリ調製しました。様々なGC含量の3株に関して、Normalized Coverageをラインで、各GC％での100 bp領域の数はヒストグラムで表示しています。